70. 잔류 염소 결정을위한 예방 조치는 무엇입니까?
염소는 수용액, 특히 낮은 농도에서 매우 불안정하며 함량은 빠르게 감소합니다. 염소의 감소율은 햇빛과 다른 강한 빛에 노출되거나 교반 할 때 가속됩니다. 따라서, 샘플링 후 샘플을 저장할 수 없으며, 염소 결정은 즉시 시작되어야하며, 물 샘플의 가벼운 노출과 교반을 피하십시오.
결정 과정에서 모든 작업은 직사광선 노출을 피해야하며 가능한 최저 온도와 부드러운 빛에서 수행하는 것이 가장 좋습니다. 또한, 모든 비색 방법은 생수의 색상과 반음도를 보완하기 위해 색상 및 탁도 블랭크가 필요합니다. 특히 탁도와 반음도가 높을 때 빈 값을 결정해야합니다.
잔류 염소를 결정하기 위해 O- 톨리딘 시각적 비색법을 사용하는 경우, 물 샘플이 표준 O- 톨리딘 용액과 골고루 혼합되고 비색 방법이 즉시 수행되는 경우 측정 된 결과는 유리 잔류 염소입니다. 비색 방법이 수행되기 전에 물 샘플을 10 분 동안 어두운 곳에 10 분 동안 배치하여 가장 높은 색소를 생성하는 경우 결과는 총 잔류 염소입니다. 총 잔류 염소에서 유리 잔류 염소는 결합 된 잔류 염소입니다.
O-Tolidine 시각적 비색 방법을 사용하여 잔류 염소가 큰지 여부를 결정할 때 주황색 노란색이 생성됩니다. 물 샘플 알칼리도가 너무 높고 잔류 염소가 작 으면 밝은 녹색 또는 연한 청색이 생성됩니다. 현재, 1 ml의 O- 톨리딘 표준 용액을 첨가하여 정상적인 연한 황색을 생성 할 수 있습니다.
71. 바이오 필름 방법의 생물학적 단계와 활성 슬러지의 차이점은 무엇입니까?
바이오 필름 처리 시스템의 생물학적 상 특성은 주로 미생물 종 및 분포 측면에서 활성 슬러지 공정의 특성과 다릅니다.
일반적으로, 수질의 점진적인 변화와 미생물 성장에 대한 환경 조건의 개선으로 인해, 바이오 필름 시스템에서 미생물의 유형과 양은 활성화 된 슬러지 공정의 유형과 양보다 많으며, 먹이 사슬은 특히 필라멘트 곰팡이, 프로토조 조아 및 메타 조아의 증가가 길고 더 복잡하며, 유사성 박테리아 및 미포의 수가 증가하고있다. 조류는 햇빛에 노출 된 지역에 나타날 수 있으며 필터 파리와 같은 곤충도 나타날 수 있습니다. 분포 특성은 바이오 필름의 두께 (표면에서 내부로) 또는 유입수 (유입과의 다른 접촉 시간)의 방향을 따라 미생물의 유형과 양이 큰 차이를 나타내는 것입니다. 다단계 처리의 첫 번째 단계 또는 하향 유량 필러 층의 상부 부분에서, 바이오 필름은 종종 응집 박테리아에 의해 지배되며, 필름 두께는 또한 비교적 크다 (2-3mm); 접촉하는 수질이 부분적으로 처리 된 수질이 더 필라멘트 박테리아, 원생 동물 및 메타 조아는 바이오 필름에 점차 나타날 것이기 때문에 단계의 수 또는 하향 유량 필러 층의 하부가 증가함에 따라; 미생물의 유형이 증가하고 있지만 바이오 필름의 두께는 지속적으로 감소하고 있습니다 (1-2mm). 바이오 필름 표면의 미생물은 모두 호기성이며, 두께가 증가함에 따라 미생물은 점차적으로 교수형이되거나 심지어 혐기성이된다.
바이오 필름은 필터 재료 또는 충전제에 고정되며 생물학적 고체 보유 시간 SRT (슬러지 연령)는 길기 때문에 긴 세대 시간과 질산 박테리아와 같은 매우 낮은 증식 속도로 미생물을 성장시킬 수 있습니다. 다수의 필라멘트 박테리아가 바이오 필름에 나타날 수 있지만 슬러지 벌킹은 발생하지 않습니다. 활성화 된 슬러지 방법과 비교하여, 바이오 필름의 유기체에서 동물 영양의 비율이 더 크고, 마이크로 아니머의 생존율도 높으며, 고 영양소 수준의 유기체에 거주 할 수 있습니다. Oligochaetes와 곤충은 약탈자 섬모, 로티퍼 및 선충 위에 거주합니다. 따라서, 바이오 필름의 먹이 사슬은 활성 슬러지의 먹이 사슬보다 길기 때문에 바이오 필름 방법에 의해 생성 된 슬러지의 양이 활성 슬러지 방법의 양보다 작습니다.
각 레벨 또는 필러의 각 층의 특징적인 미생물은 다른 폐수 품질로 인해 다를 것입니다. 유입 농도가 증가 할 때, 원래 레벨의 특징적인 미생물이 아래쪽으로 이동한다는 것을 관찰 할 수있다. 즉, 원래 필러의 전면 레벨 또는 상단 층에 미생물이 필러의 후면 또는 하부 층에 나타날 수있다. 따라서, 폐수 농도 또는 슬러지 하중의 변화를 유추하기 위해 생물학적 상 관찰을 통해 유사한 변화가 관찰 될 수있다.
72. 물의 총 박테리아 수 지표의 의미는 무엇입니까?
총 박테리아 수는 37oC에서 24 시간 동안 배양 한 후 영양 한천 배지에서 1ml의 물 샘플에서 성장한 콜로니의 수를 말합니다. 측정 단위는 일반적으로 각 ML의 물에 포함 된 총 박테리아 수입니다. 물에서 박테리아의 총 수는 종종 수역의 유기 오염 정도와 관련이 있으며, 수질 오염 정도와 인체에 대한 가능한 피해를 평가하는 중요한 지표 중 하나입니다.
총 박테리아 수의 분석 방법은 표준 플레이트 방법을 사용하여 물 샘플에서 박테리아를 계산하는데, 이는 물에서 호기성 및 교수형 이종 박테리아의 밀도를 결정하는 방법입니다. 그러나, 영양소 기반이나 환경 조건이 물 샘플에서 모든 박테리아의 생리적 요구 사항을 충족 할 수없고, 물의 박테리아는 개별 개체, 쌍, 체인, 클러스터 또는 클러스터의 형태로 존재할 수 있기 때문에 측정 된 콜로니 수는 실제로 시험 된 물 샘플에서 생존하는 박테리아의 수보다 낮습니다.
73. 총 박테리아의 총 수를 결정하기위한 예방 조치는 무엇입니까?
무균 조작 방법을 사용하여 1ml의 물 샘플 또는 적절한 희석 배수로 2 ~ 3 개의 희석 된 물 샘플을 흡수하고 멸균 된 판에 주입 한 다음 15ml의 영양 한천 배지에 붓고 물 샘플과 철저히 섞어 각각의 물 샘플에 대해 2 개의 병렬 샘플을 만들어 각 시험에 쏟아진 빈 제어를 만들어야합니다.
문화 후, 플레이트 식민지 수는 즉시 수행되어야합니다. 카운트를 연기 해야하는 경우 플레이트는 5-10oC 환경에 저장 될 수 있지만 24 시간 이상은 보관할 수 있으며이 실습은 일상적인 작동 방법으로 사용해서는 안됩니다.
접시 식민지를 세면 육안으로 관찰 할 수 있습니다. 생략을 방지하려면 돋보기를 사용하여 필요한 경우 확인하십시오. 거리가 가장 작은 식민지의 직경보다 작다면, 서로 비슷하고 서로 가깝지만 만지지 않는 식민지의 경우, 별도로 계산되어야합니다. 밀접하게 접촉하지만 다른 외관 (형태 또는 색상)을 가진 식민지도 별도로 계산되어야합니다.
동일한 희석의 평균 식민지 수를 계산할 때, 판 중 하나에 큰 플레이크 콜로니가 자라는 경우 사용해서는 안되며, 플레이크 식민지가없는 플레이트는 희석의 콜로니 수로 사용되어야합니다. 플레이크 콜로니가 판의 절반 미만이고 나머지 식민지의 분포가 매우 균일 한 경우, 전체 판의 콜로니 수를 나타 내기 위해 균일 한 성장을 갖는 플레이트의 1/2의 식민지 수에 2를 곱할 수 있습니다.
총 박테리아 수의 결과는 각각의 플레이트의 총 콜로니 수 또는 동일한 희석의 병렬 실험 플레이트에서 평균 콜로니 수에 희석 다중를 곱한 것입니다. 최종 결과가 100 이내에 있으면 결과는 실제 식민지 수에 따라 기록됩니다. 그것이 100보다 큰 경우, 두 개의 중요한 수치가 사용되어 10의 지수로 표현됩니다. 콜로니 수를 계산할 수없는 경우 결과를보고 할 때 희석 다중에 주목해야합니다.
74. 식민지 수 결과에 따라 물 샘플에서 총 박테리아 수를 계산하는 방법은 무엇입니까?
총 박테리아 수의 시험 결과를 계산할 때, 다른 희석에서 평균 식민지 수를 기준으로 비교하고 계산해야한다. 이 방법은 다음과 같습니다.
먼저, 계산을 위해 평균 식민지 수가 30에서 300 사이 인 경우를 선택하십시오. 하나의 희석에서만 평균 콜로니 가이 범위를 충족 할 때, 희석 된 다중의 평균 콜로니 수는 물 샘플의 총 박테리아 수의 결과로 사용됩니다.
⑵ 2 개의 희석액에서 평균 콜로니 수가 30에서 300 사이 인 경우, 계산 방법은이 둘의 비에 따라 결정되어야합니다. 비율이 2 미만인 경우, 물 샘플의 총 박테리아 수의 결과로 희석 된 다중의 평균 콜로니 수의 평균 평균 수에 곱해야합니다. 비율이 2보다 큰 경우, 평균 콜로니 수의 더 작은 수는 물 샘플의 총 박테리아 수의 결과로 다중의 희석을 곱해야한다.
the 모든 희석액의 평균 콜로니 수가 300보다 큰 경우, 다중 곱한 다중의 최대 희석의 평균 콜로니 수는 물 샘플의 총 박테리아 수의 결과로 사용되어야한다.
the 모든 희석액의 평균 콜로니 수가 30 미만인 경우, 다중 곱하기 다중의 다중 곱하기의 평균 콜로니 수는 물 샘플의 총 박테리아 수의 결과로 사용되어야한다.
모든 희석액의 평균 식민지 수가 30 ~ 300 사이가 아닌 경우, 희석 다중의 배수를 곱한 평균 식민지 수는 물 샘플의 총 박테리아 수의 결과로 사용되어야한다.
75. 대장균 수 (값)의 의미는 무엇입니까?
대장균 박테리아는 호기성 또는 교수형 혐기성, 유당 발효, 그람 음성, 포자없는 막대의 종류를 나타냅니다. 따라서 때로는 대형 대장균 또는 대장균이라고도합니다. 대장균 박테리아는 24 시간 동안 락토오스 배지에서 락토오스 배지에서 배양 한 후 산 및 가스를 생산할 수 있습니다. 대장균 박테리아의 수 (값)는 일반적으로 1L 또는 100ml의 물에 포함 된 대장균 박테리아의 수에서 일반적으로 측정됩니다.
수원이 대변으로 오염 된 경우, 장 병원체에 의해 오염되어 장 감염 질환을 유발할 수 있습니다. 장 병원체는 미생물 수의 상대적으로 적은 비율을 차지하기 때문에, 물, 특히 수돗물과 병원체를 분리하는 것은 종종 매우 어렵다. 대장균 박테리아는 장 에어로빅 박테리아 중에서 가장 흔하고 가장 큰 박테리아이므로 대변 오염을위한 지표 박테리아로 종종 사용됩니다. 즉, 물에서 대장균 박테리아의 수는 수원이 대변에 의해 오염되는지 판단하는데 사용되며, 장 병원체에 의해 수원이 오염 된 것을 추론 할 가능성이 검출된다.
76. 대장균 박테리아의 수를 결정하는 방법은 무엇입니까?
총 대장균 박테리아를 결정하는 데 일반적으로 사용되는 두 가지 방법이 있습니다 : 다중 튜브 발효 방법 및 막 필터 방법.
다중 튜브 발효 방법은 유당 발효, 그람 음성 염색, 포자 없음 및 막대 모양과 같은 대장균 박테리아의 특성을 기반으로합니다. 물 샘플에서 총 대장균 박테리아의 총 수를 결정하기 위해 세 단계를 통해 테스트됩니다. 멀티 튜브 발효 방법은 가장 가능성있는 숫자를 사용하여 MPN이라고도하는 실험 결과를 표현합니다. 실제로 통계 이론에 기초하여 수역에서 대장균의 밀도와 위생 품질을 추정하는 방법입니다. 이 추정치는 실제 숫자보다 큰 경향이 있습니다. 대장균 수의 추정 값은 양성 및 음성 결과를 모두 나타내는 희석에 의해 결정됩니다. 물 샘플 테스트에 필요한 반복 수를 설계 할 때 필요한 데이터의 정확도를 기반으로해야합니다.
막 필터 방법은 특수 멸균 미세 다공성 막을 사용하여 물 샘플을 여과합니다. 박테리아가 막에 포획 된 후, 막은 배양을위한 푸카 신 나트륨 황산나 나트륨 배양 배지에 부착된다. 대장균 박테리아는 유당을 발효시킬 수 있기 때문에, 필터 막상에서 재배 후 금속 광택을 갖는 자주색-빨간색 콜로니가 나타날 것이다. 필터 막 에서이 특성으로 콜로니의 수를 계산함으로써, 각 물 샘플의 각 문자에 포함 된 대장균 박테리아의 수를 계산할 수있다. 필터 막 방법은 더 많은 양의 물 샘플을 측정 할 수 있고 다중 튜브 발효 방법보다 더 빠른 결과를 얻을 수 있지만, 탁도가 높고 비 E의 밀도가 낮을 때 효과는 나빠집니다. 사상 박테리아가 높습니다.
77. 잔류 염소는 무엇입니까?
잔류 염소는 물에 일정 시간 동안 염소로 소독 된 후 물에 남아있는 염소입니다. 그 기능은 지속적인 살균 능력을 유지하는 것입니다. 물이 파이프 네트워크로 들어가는 시점부터 물에서 소독제의 효과는 가능한 병원체 손상 및 재생성을 방지하기 위해 유지되어야합니다. 이를 위해서는 물에 첨가 된 소독제의 양은 물에서 병원체를 죽이는 요구를 충족시켜야 할뿐만 아니라 물 운송 과정에서 병원체의 재배성을 방지하기 위해 일정량의 잔류량을 유지해야합니다. 염소 소독이 사용되는 경우, 그 당시 소독 요구를 초과하는 소독제의 일부는 잔류 염소입니다.
잔류 염소는 유리 잔류 염소 (CL2, HOCL 및 OCL-)와 결합 된 잔류 염소 (NH2CL, NHCL2 및 NCL3)의 두 가지 형태를 갖는다. 이 두 형태는 동시에 동일한 물 샘플에 존재할 수 있으며,이 두 형태는 총 잔류 염소라고합니다. 유리 잔류 염소는 강한 살균 능력을 가지고 있지만 분해하기 쉽습니다. 결합 된 잔류 염소는 세균성 능력이 약하지만 물에서 더 오래 지속됩니다. 일반적으로 물에 암모니아 또는 암모늄이 없을 때, 잔류 염소는 자유 잔류 염소이며, 물에 암모니아 또는 암모늄이있을 때 잔류 염소는 일반적으로 결합 된 잔류 염소와 때때로 잔류 염소와 결합 된 잔류 염소를 함유합니다. 잔류 염소의 양은 적절해야합니다. 너무 낮은 것은 병원체를 예방하고 치료하는 데 중요한 역할을하지 않습니다. 너무 높으면 소독 비용이 증가 할뿐만 아니라 인체와 접촉 할 때 인체에 해를 끼칠 수도 있습니다.
개념적으로, 잔류 염소는 염소 가스 및 염소 시리즈 소독제를 지칭한다. 염소 이산화 염소와 같은 다른 비 염소 소독제를 사용할 때, 잔류 염소는 특정 접촉 기간 후에 물에 남은 나머지 소독제로 이해되어야합니다.
78. 잔류 염소를 결정하는 방법은 무엇입니까? 각각의 해당 스코프는 무엇입니까?
The determination of residual chlorine can be carried out by iodine titration, o-tolidine visual colorimetry, N,N-diethyl-p-phenylenediamine (DPD) ferrous titration (GB 11897-89), N,N-diethyl-p-phenylenediamine spectrophotometry (GB 11898-89), etc. The iodine titration method can only determine the total residual 물 샘플의 염소; O- 톨리딘 시각적 비색법 방법은 작동 절차를 변화시킴으로써 총 잔류 염소 및 유리 잔류 염소를 각각 결정할 수있다; N, N- 디 에틸 -P- 페닐 렌 디아민 적정 방법 또는 분광 광도법 방법은 0.03-5 mg/L의 농도 범위에서 유리 염소 또는 총 염소를 결정할 수 있으며, 작동 절차, 모노 클로라민, 디클로라민 및 일부 결합 클로린 성분을 각각 변경함으로써 결정될 수있다.
요오드 적정 방법은 1 mg/L보다 큰 총 잔류 염소 함량을 갖는 물 샘플에 적합하며, 첨가 된 염소의 양을 결정하는 데 일반적으로 사용되는 방법이다. O-Tolidine 시각적 비색 방법은 작동하기가 간단하며 식수에서 잔류 염소를 결정하는 일반적인 방법입니다. 측정 범위는 0.01-10 mg/L입니다. N, N- 디 에틸 -P- 페닐 렌 디아민 적정 방법 또는 분광 광도법 방법은 높은 감도를 가지며 낮은 잔류 염소 함량을 갖는 물 샘플을 결정할 수있다. 유기물을 함유 한 하수에서 사용 가능한 총 염소를 결정하는 데 적합합니다. 두 방법의 측정 범위는 각각 0.05-1.5 mg/L 및 0.03-5 mg/L입니다.